最新动态更多>>

安隆科讯春节放假公告

各位给予安隆科讯支持的老师们:   您们好!我们安隆科讯的春节放假时间定为1月20日-2月2日,2月3号(正月初七正式上班)。节假日期间如果您有什么需要咨询或者帮助以及有推荐文章或者反馈意见的,依然可以通过邮箱sales@anachro.com,或者通过微信公众号(安隆代谢组)给我们留言,我们会尽快回复您的消息!   提前祝各位老师新年快乐,万事如意,大吉大利!

2016春季培训班圆满结束

4月16-17日  武汉

武汉安隆科讯开展了为期两天的代谢组培训班活动,期间共有11位老师分别对代谢组学实验方法及操作流程、NMR基础及数据处理、LC-MS基础及数据处理、GC-MS基础及数据处理、统计学数据解析、代谢组学实验策略及文章、如何选择合适的统计学方法及脂质组学研究进展等方面进行了介绍。为保证培训班的质量,这一期实行小班授课,且每节课程都设有互动环节,大家可以对有疑问的地方当堂提问。培训班现场气氛十分活跃,随着课程的进行每每出现整齐的翻动书页的声音,这认真的氛围让在场的小编都感到与有荣焉~

这期培训班没有报上名的老师也别担心,安隆科讯计划每年开展4期培训班活动,期待下一期培训班能够与您相遇,如果您对我们的培训班有什么好的建议和意见,欢迎将您的建议发送到sales@anachro.com这个邮箱,我们会定期送上答谢小礼品哦~

培训班咨询电话:027-87258771   
培训班咨询 QQ:800082094

安隆科讯春节放假公告

各位给予安隆科讯支持的老师们:   您们好,由于特殊安排,我们今年的放假时间会比往年早一点,春节放假时间定为1月29日-2月13日,我们将于2月14日(正月初七)开始正常上班。节假日期间如果您有什么需要咨询或帮助的,依然可以通过邮件sales@anachro.com,或者通过微信公众号(安隆代谢组)给我们留言,我们会尽快回复您的消息!   提前祝各位老师新年快乐!猴年大吉!

2016代谢组暨多元变量统计分析培训班(第一期)

2016代谢组暨多元变量统计分析培训班(第一期)

Training course of metabolomics & MVDA.2016(1st)

代谢组学( Metabolomics )是继基因组学和蛋白质组学之后发展起来的一门新兴学科,在疾病、药毒药理、植物、微生物、食品、营养等多个研究领域正扮演着越来越重要的角色。随着研究的不断深人,代谢组学在实验设计、分析平台、数据处理及整体流程上都面临了越来越多的挑战。 武汉安隆科讯技术有限公司代谢组培训班将邀请国内从事不同代谢组研究的专家学者们一起,围绕当今代谢组学的研究热点及前沿领域,为大家深度探讨如何将代谢组学技术与自己的研究领域完美结合、目前国际上的先进代谢组学分析技术与数据处理经验以及相关文章的撰写与发表等。

 培训时间:

2016年 4月16-17日

 培训地址:

 武汉马哥孛罗酒店(武汉市江岸区沿江大道159号时代广场)
日期 时间 课程名称 课程内容
4月16日 (周六) 08:30-09:00 开班仪式-欢迎致辞 授课老师及学员介绍
09:00-09:45 代谢组学简介及应用 1.  代谢组学简介   2.  代谢组学三大研究平台基本介绍     3.  代谢组学的应用领域
09:45-10:30 代谢组学实验方法及操作流程 1.  代谢组学一般实验流程   2.  代谢组学样本收集及注意事项
10:30-10:45 茶歇
10:45-12:00 NMR基础及数据处理专题 1.  NMR基本知识简介    2.  基于NMR的不同代谢组数据处理方法及比较 3.  NMR代谢组案例解析
12:00-13:00 午餐
13:00-13:30 1. 现场演示液氮模样2. 现场制作液氮冰淇淋,免费品尝
13:30-15:00 LC-MS基础及数据处理专题 1.  LC-MS基本知识简介   2.  LC-MS定性定量技术要点   3.  XCMS数据处理方法
15:00-15:15 茶歇
15:15-16:45 GC-MS基础及数据处理专题 1.  GC-MS基本知识简介    2.  GC-MS定性定量技术要点 3.  GC-MS数据处理方法    4.  LC-MS和GC-MS在广筛中的应用
15:15-17:00 答疑
17:30-19:00 欢迎晚宴
08:30-09:30 统计学数据解析 1.   预处理、归一化    2.  PCA、PLS-DA、OPLS-DA、ROC 3.  模型构建、验证     4.  差异物筛选     5. 聚类分析   6.  热图 7.  差异代谢通路分析
4月17日 (周日) 09:30-10:30 如何针对代谢组的数据特点 选择合适的统计学方法 1.  代谢组学的数据特点 2.  如何选择合适的统计学方法
10:30-10:45 茶歇
10:45-11:10 11:10-11:35 11:35-12:00 案例解析 代谢组学在医学领域的应用 代谢组学在动物营养研究中的应用 代谢组学在植物研究中的应用
12:00-13:00 午餐
13:00-13:30 趣味科学分享——搞笑诺贝尔奖
13:30-15:00 15:00-15:15 代谢组学实验策略及文章发表 1.   代谢组学实验设计,代谢组与既有研究方向如何结合,如何帮助我们 2.  文章发表中数据的利用及图表的选择    3.  代谢组数据发表杂志的方向 4.   专业代谢组方向杂志期刊的影响因子、实验数据要求及对代谢组实验 研究标准的倡议书
15:15-16:30 茶歇
16:30-17:00 脂质组学简介及应用 1.    脂质组学简介     2.  基于质谱的脂质组学研究方法    3.  脂质组学的应用
交流活动

 相关事项说明如下:

培 训 费:3500元/人(含学费、资料费、午餐及欢迎晚宴),住宿自理 报名事项:2016年3月15日前完成缴费,培训费9折优惠 报名截止日期:2016年4月15日(报满截止,不接受现场报名缴费) 报名人数:人数限制为35人 报名格式:发送您的姓名、单位、研究方法、联系方式和邮箱地址      至:zhiping.xu@anachro.com完成报名工作。      

 转账方式:

汇款到以下账户,不接受现金 开户名: 武汉安隆科讯技术有限公司    
开户行: 建行武汉省直支行 帐 号: 42001868608053029721    
税 号: 420105587996854  汇款时请务必注明学员姓名、单位和“安隆科讯培训班”字样;    汇款后请将汇款凭证电子版发送至    邮箱zhiping.xu@anachro.com,以确保汇款安全。

 联系方式:

联系地点:武汉市武昌区和平大道1178号,武汉安隆科讯技术有限公司 联系人:徐志平 
联系电话:17771863626 
     
027-87258771 
邮箱:
zhiping.xu@anachro.com

环境科学

 水体污染

 大气污染

 土壤污染

应用前景:
无论是大气污染、水污染还是土壤污染,最终都将影响依赖环境生存的生物体,研究这些环境污染是怎样影响到生物体,代谢组学研究会将提供一个全新的角度。

海洋污染对贻贝代谢的影响

研究背景

沿海地区的污染主要来自人类的工业以及日常活动,这会导致水体中有毒物质含量上升,而港口比较封闭,导致水质更差。由于贻贝分布范围广、对环境的忍耐力、对毒性化学物质的蓄积作用等,使其成为比较合适的水环境监测的生物。

研究目的

NMR代谢组学方法研究污染严重和未被污染的两个水域的贻贝之间代谢物层面的差异,帮助了解水体污染对生物体带来的影响。

实验设计

1.样本分类:贻贝在实验室培养后置于Priolo(污染严重)和Vendicari(未被污染)海域中培养
2. NMR进行组织检测

研究结果——环境科学新方法

本次研究发现了污染和未被污染水域的贻贝生物体代谢层面存在显著差异,水污染对贻贝代谢情况造成了影响。
1Priolo贻贝消化腺表现出组织学病变,如:憩室形态改变、明显的溶血性渗透。这些或许会损伤其代谢活动;2Priolo贻贝中氨基酸水平明显上升。据报道,游离氨基酸及它们的分解产物可以平衡细胞渗透压,Priolo贻贝中氨基酸含量的明显上升与有毒物质对细胞渗透压造成干扰有直接关系;3能量代谢的改变亦被观察到,有氧呼吸被抑制导致乳酸上升;4Priolo贻贝体内乙酰乙酸的含量升高。乙酰乙酸是一种重要的酮体,是脂肪氧化的终产物。乙酰乙酸的上升和脂质代谢的改变有关,而苯丙氨酸、赖氨酸、亮氨酸、异亮氨酸和酪氨酸在一定代谢条件下可以转化为乙酰乙酸。乙酰乙酸可以反应生成琥珀酸;
5增加的琥珀酸和延胡索酸通过柠檬酸循环可以转为为草酸乙酸盐,它是氨基酸、嘌吟和嘧啶的前体,这个结果与含氮碱基的增加相一致;6Priolo贻贝中谷氨酸含量的降低与糖酵解代谢相关;7Priolo贻贝中腺嘌吟的升高与精氨酸的出现有关。精氨酸是磷酸精氨酸和ADP反应的终产物,而磷酸精氨酸是无脊椎动物中ATP再生中主要的高能磷酸肌酸,这个变化与ATP代谢的改变相吻合。
研究启示—生态毒理学结合
通过代谢组信息可以观察到污染对生物体造成的影响,表明在生态毒理方面,代谢组学是可以评估环境对生物体健康状况的影响。
原文索引:
Metabolomic investigation of Mytilus galloprovincialis (Lamarck 1819) caged in aquatic environments, Ecotoxicology of Environmental Safety, 2012, 84: 139-146

环境科学领域2015年发表的文献

  1. Nagato E G, Lankadurai B P, Soong R, et al. Development of an NMR microprobe procedure for high‐throughput environmental metabolomics of Daphnia magna[J]. Magnetic Resonance in Chemistry, 2015.
  2. Zhou J, Chen B, Cai Z. Metabolomics-based approach for assessing the toxicity mechanisms of dibutyl phthalate to abalone (Haliotis diversicolor supertexta)[J]. Environmental Science and Pollution Research, 2015, 22(7): 5092-5099.
  3. Ji C, Cao L, Li F. Toxicological evaluation of two pedigrees of clam Ruditapes philippinarum as bioindicators of heavy metal contaminants using metabolomics[J]. Environmental toxicology and pharmacology, 2015, 39(2): 545-554.
  4. Zhao L, Huang Y, Hu J, et al. 1H NMR and GC-MS based metabolomics reveal defense and detoxification mechanism of cucumber plant under nano-Cu stress[J]. Environmental science & technology, 2016.
  5. Ali K, Verpoorte R, Wilson E G, et al. Chemical Characterization of Marine Organisms Using a Metabolomic Approach[J]. Marine Biomedicine: From Beach to Bedside, 2015: 23.
  6. Lamichhane S, Westerhuis J A, Ouwehand A C, et al. Gut microbial activity as influenced by fiber digestion: dynamic metabolomics in an in vitro colon simulator[J]. Metabolomics, 2016, 12(2): 1-12.
  7. Hurley-Sanders J L, Stoskopf M K, Nelson S A C, et al. Tissue extraction methods for metabolic profiling of a freshwater bivalve, Elliptio complanata (Lightfoot, 1786)[J]. American Malacological Bulletin, 2015, 33(2): 1-10.
  8. Zhang W, Tan N G J, Fu B, et al. Metallomics and NMR-based metabolomics of Chlorella sp. reveal the synergistic role of copper and cadmium in multi-metal toxicity and oxidative stress[J]. Metallomics, 2015, 7(3): 426-438.
  9. Kim S, Yoon D, Lee M, et al. Metabolic responses in zebrafish (Danio rerio) exposed to zinc and cadmium by nuclear magnetic resonance-based metabolomics[J]. Chemistry and Ecology, 2015: 1-13.
  10. Liu Y, Chen T, Li M H, et al. 1 H NMR based metabolomics approach to study the toxic effects of dichlorvos on goldfish (Carassius auratus)[J]. Chemosphere, 2015, 138: 537-545.
  11. Li M H, Ruan L Y, Liu Y, et al. Insight into biological system responses in goldfish (Carassius auratus) to multiple doses of avermectin exposure by integrated 1 H NMR-based metabolomics[J]. Toxicology Research, 2015, 4(5): 1374-1388.
  12. Hu J Z, Wang X, Feng J, et al. Metabolite Signatures in Hydrophilic Extracts of Mouse Lungs Exposed to Cigarette Smoke Revealed by 1H NMR Metabolomics Investigation[J]. Metabolomics: open access, 2015, 5(2).
  13. Li L Z, Wu H, Ji C, et al. A metabolomic study on the responses of daphnia magna exposed to silver nitrate and coated silver nanoparticles[J]. Ecotoxicology and environmental safety, 2015, 119: 66-73.
  14. Moazzami A A, Frank S, Gombert A, et al. Non-targeted 1 H-NMR-metabolomics suggest the induction of master regulators of energy metabolism in the liver of vitamin E-deficient rats[J]. Food & function, 2015, 6(4): 1090-1097.
  15. Cappello T, Maisano M, Giannetto A, et al. Neurotoxicological effects on marine mussel Mytilus galloprovincialis caged at petrochemical contaminated areas (eastern Sicily, Italy): 1 H NMR and immunohistochemical assays[J]. Comparative Biochemistry and Physiology Part C: Toxicology & Pharmacology, 2015, 169: 7-15.